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RED DE CRIADORES por FRANK MARINI & MARTIN MOE

 

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Cultivo del camarón mísido y  Trocoforas de bivalvo(larvas velígeras)

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Por una u otra razón no existe el organismo perfecto para el cultivo de larvas de peces marinos. Cada especie de pez tiene su constelación de requerimientos ecológicos y de alimentación durante su estado larvario y esta adaptado para una mejor sobrevivencia en aguas costeras o en las oceánicas con una particular combinación de elementos ecológicos, físicos y factores químicos. Es absolutamente increíble, y un testimonio de la resilencia (recuperación), vigor y adaptabilidad de estas pequeñas criaturas marinas removidas a expensas del mar abierto y que podemos cultivar en cualquier pequeña caja de cristal. Por supuesto la inteligencia y determinación del ser humano tiene mucho que ver con esto también.

En estos meses Martin y yo ofrecimos ayudar a alimentar estas delicadas crías proveyéndolas de dos microalimentos adicionales; uno grande-juveniles de mísido y otro pequeño invertebrado veligero. Estos microalimentos son complementos de varios tamaños y que uno puede agregar al menú para alimentar crías difíciles. Ambos microalimentos son alimentos avanzados de acuicultura, pero si puede cultivarlos al final de este artículo y no se pierde, tendrá suficiente referencia y experiencia para un fácil cultivo de este tipo de alimentos.

Camarón Possum (Mysis sp.)

Antecedentes: Los mísidos son crustáceos parecidos pequeños camarones  con un caparazón duro cubriendo su tórax y pueden crecer hasta 1 cm. de largo (Reitsema & Neff 1980) [Fig1]. Adaptado a la vida en los estuarios, este robusto y resistente crustáceo puede tolerar un amplio rango de salinidad y temperatura. Los mísidos habitan aguas estuarinas desde Florida, EU y hasta la costa este de México(Bowman 1964). De acuerdo a Price (1976), Mysidopsis almyra es el mísido dominante en los estuarios que rodean la Isla Galvestone en Texas, EU, comprendiendo el 82% de los mísidos colectados. Los mísidos (principalmente Mysidopsis almyra o Mysidopsis bahia) han sido usados como indicadores  de toxicidad en el agua (Miller 1990) por muchos años y su cultivo en laboratorios es común (Reitsema & Neff 1980). Antes del advenimiento del cultivo en laboratorio, los mísidos eran rutinariamente colectados con red (McKenney 1996). Las especies de Mysidopsis son omnívoras, caníbales; y se alimentan con diatomeas y pequeños crustáceos como los copépodos  (Mauchline 1980).

Ciclo de vida

Estos crustáceos son llamados camarones possum  por que las hembras cargan sus crías en una  bolsa o marsupio formada en la base de sus patas. Las hembras pueden cargar hasta treinta crías en su bolsa. Pero 6 o 7 es la puesta usual. Cada cría es aproximadamente de 4 a 5 veces más grande que nauplios de Artemia recién nacidos (artemia salina bebes). Las hembras producen juveniles constantemente llenando sus bolsas de huevos tan pronto como la última cría la ha sido liberada. En tres semanas el joven mísido alcanzara el tamaño adulto de pulgada (1.25 cm.), creando una nueva generación cada treinta días. Los machos mísidos son ligeramente más grandes que las hembras y son identificados por que carece la bolsa hialina. Cepas de mísidos criados en tanques están disponibles, han sido seleccionados por su resistencia a enfermedades y están preadaptadas a la vida en acuario.(ver literatura complementaria y la lista de proveedores en línea)

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Fig 1. Dibujo de un mísido típicohembra
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Fig1a - Una fotomicrografía de Mysidopsis Bahia. foto cortesía de www.calacademy.org
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Fig 2. Diagrama de un cultivo estático de mísidos. Los tanque de arriba (cultivos base) son usados para mantener un stock, los tanques de la parte media (de eclosión) se usan para eclosión, y los de abajo son el filtro biológico. Conteniendo filtro de partículas, carbón activo y un filtro biológico sumergido de conchas de ostión. El agua drena a través de los tanques de cría y llega hasta el tanque del filtro biológico. Esta llega al filtro de conchas de ostión trituradas y regresa a los criaderos de eclosión y cultivo a través de las líneas. 
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Fig 3 Un sistema masivo de cultivo de mísidos. hay tanques de 30 galones en línea en este laboratorio. Muchos mísidos y artemias  son criados en este laboratorio de cultivo.

Cultivo

Su  uso como organismo bio-ensayador es ampliamente conocido, los mísidos son notablemente poco demandantes en términos de calidad de agua (siempre y cuando los valores estén en rangos dentro de lo permitido). De acuerdo con Hemdal, no se ha visto una mortalidad importante en tanques con concentraciones de amonio que alcanzan 1 ppm. La densidad de mísidos afecta la reproducción. De acuerdo con Lussier et al (1998). Un cultivo muy poblado cesa su reproducción, resultando en una proporción de hembras con sacos de cría vacíos. Los autores anteriores indican que una densidad óptima de mísidos fue de 15 adultos/L en un sistema con corriente y 10 mísidos adultos/L en un cultivo estático [Fig. 2]. La habilidad de criar mísidos en grandes cantidades a bajo costo posibilita al acuarista exitoso la cría de especies marinas únicas tales como dragones marinos y cefalópodos (Hanlon, Turk & Lee 1991).

Promedios de calidad del agua en los tanques de cría de mísidos (de acuerdo con Hemdal):

Temperatura = 75°F
Salinidad = 20 - 22ppt
pH = 8.2
Luz = 75 candelas
Amonio = 0.1 mg/l
Nitritoo = 0.01 mg/l


Enriqueciendo mísidos

El enriquecimiento ha mostrado ser una forma efectiva de asegurar suficientes mísidos nutritivos. La forma más fácil para enriquecer mísidos es alimentarlos con nauplios de artemias enriquecidas (Kuhn et al. 1991). Experimentos en sistemas estáticos (cerrados) indican que los nauplios de Artemia son el mejor tipo de alimentación para mísidos (Domingues et al. 1998).De cualquier forma es altamente recomendable enriquecer ambos, mísidos adultos y juveniles con Artemias fortificadas con ácidos grasos marinos ( como el fitoplancton-enriquecededor o complemento Selco® )  12 horas ante de antes de alimentar (Vease la  Breeder's Net column). Recordemos que los cistes de Artemia se eclosionan por 24 hrs. bajo una intensa iluminación flourecente a una temperatura de 28°C con una salinidad de entre 18 y 22 y son posteriormente colectados con malla de 53 um. El enriquecimiento de Artemias recién eclosionadas se acompaña de un baño a los animales con  Selco® y agua de mar a 0.25g Selco®/L de agua de mar por 12 hrs.

Cultivo de mísidos

Las siguientes instrucciones de cultivo se basan en métodos usados por Lewis (Lewis, 2000) para criar mísidos de forma comercial para Aquatic Indicators (vea la lista de proveedores en línea). Cultivar mísidos puede ser estresante por el trabajo que representa el proyecto, sin embargo el cultivo de mísidos puede ser hecho por cualquiera que le dedique tiempo y esfuerzo. Primeramente, un tanque de vidrio alto de 20 galones o más, agregue un filtro de placa a los lados, pero deje la parte media sin este (sin filtro de placa) para facilitar la colecta de los mísidos. Como ejemplo, si esta usando un tanque de 30-galones. Instale placas para 10 galones a los lados del tanque, pero deje la parte media sin nada, solo el cristal de fondo se observa en medio de las dos placas. Ajuste la gravedad específica en 1022 y ponga la temperatura a75-78F.

Una vez que el tanque ha ciclado y la biofiltración se estableció introduzca 20-30 mísidos adultos para iniciar el cultivo. Establezca un fotoperiodo de 16 hrs. luz y 8 oscuridad (los mísidos se aparean en la noche) y realicé un cambio de agua de 15-20% semanalmente. Alimente sus mísidos nuevos con Artemia bebe al menos dos veces al día. Mantengase atento a la calidad del agua en el tanque de cría y asegurese que casi todas las artemias se hayan consumido en cada alimentación. Para optimizar el crecimiento y reproducción mantenga la densidad aproximadamente a 10 camarones en estado nauplio/ml agua (debe mantener su producción de artemia salina a tope para la siguiente o anterior columna de Red de Criadores).

Una de las claves para criar es prevenir el canibalismo separando los adultos de los juveniles. Para estudios de laboratorios, la separación se realiza manualmente aislando los adultos, transfiriendo las hembras cargadas a un plato de cultivo y removiendo los juveniles con una pipeta.

Un mejor método puede verse donde adultos y juveniles se han separado automáticamente. Si esta planeando montar un tanque separado solo para los adultos al lado del tanque principal de cultivo. Mantenga la parte de arriba de este tanque de separación exactamente a la misma altura que el de cría, pocisione la línea de aire en una esquina del tanque de los adultos para que regrese agua al tanque principal de cría, mientras que un tubo sifón en la esquina opuesta mantienen el nivel del agua (ver diagrama) entre ambos tanques. El tubo debe estar provisto de malla para plancton de nylon de una abertura apropiada (800 micrones) para que restringa los adultos y solo deje pasar las larvas, de la misma forma el sifón debe tener malla para plancton de 500 nM  que dejará pasar nauplios de artemia recién nacida pero no los mísidos juveniles. Si se ajusta la línea de aire para que produzca un lento, generoso, constante flujo de agua que automáticamente deposite las artemias en el tanque de cultivo mientras que los adultos son aislados en el tanque adyacente, se elimina el canibalismo.

Lo mejor es dejar la población de mísidos crecer por un par de generaciones e incrementar su stock antes de que comience a criarlos de manera regular. Esto significa que deberá comenzar sus cultivos de 6 a 8 semanas antes de necesitarlos. Como ejemplo, cuando ha criado stocks en un número equivalente a 400-500 adultos, tiene que tener la capacidad de cosechar alrededor de 200 juveniles por día para alimentar las crías de peces sin preocuparse de que la reserva de mísidos decline.

Cosechando mísidos

Para cosechar los mísidos deslice una red por la columna de agua hasta el cristal del fondo al centro del tanque, y seleccione los mísidos que son más apropiados en tamaño para sus crías de peces. Usando redes de abertura progresiva puede obtener los nauplios de mísidos más grandes que serán perfectos para sus crías de peces, o también usando malla que le ayude a capturar mísidos más pequeños. Asegurase de que deje al menos 20% de cada generación de mísidos para que su cultivo sea auto sustentable.

Uno de los  grandes problemas para criar mísidos en casa es la de obtener suficientes para empezar un cultivo. Aquatic Indicators (vea la lista de proveedores) es una de las pocas compañías que ofrece mísidos vivos. Una orden grande trae hasta 100 Mysidopsis-suficientes para iniciar varios cultivos.

Atajos y trucos (de acuerdo con Hemdal):
* Varios hidroides y otras "pestes" pueden aparecer en el tanque de cría y necesitan ser removidas del fondo del tanque. Estas pestes compiten con los mísidos por alimento y de hecho consumen juveniles.
* Cuando la productividad es baja, inicie un nuevo cultivo después de 7 días. El razonamiento es que hay más de una semana de diferencia de edad. Los mísidos más viejos predarán los nuevos que agregue.
* Un excedente de mísidos adultos puede ser congelado para alimentar después, o adicionarlos vivos en un acuario grande, como "un día lluvioso"
*La mejor forma de sacar las larvas del tanque de cría es con un sifón. Con la práctica, un acuarista puede sacar hasta 20 mísidos bebe por minuto. El truco es evitar perder el tiempo persiguiendo los bebes de 2 o 4 días, esos son muy veloces. Concéntrese en los 2 días que están en el cristal del acuario. Los que flotan libremente escaparán en cualquier dirección, haciendo su captura muy difícil. Los mísidos se congregan por todo el cristal solo pueden escapar en un plano de 180° lejos del sifón.
 *Después de un tiempo, la productividad en el tanque de cría puede incrementarse removiendo selectivamente a la mayoría de los mísidos machos. Esto reduce la depredación de las larvas y de las artemias que les sirven de alimento. Con una red pequeña, capture la mayoría que no presente marsupio o bolsa de cría, seguro removerá algunas hembras que no estén criando con este método, pero la mayoría será macho. Incluso un proporción 1:10 de mísidos con bolsa o sin bolsa producirán muchos descendientes.
*Algunos acuarios públicos desarrollaron técnicas para separar larvas fácilmente: Separe los mísidos usando mallas de diferente tamaño de abertura. En la mayoría de los casos, esta simplemente consiste en atrapar todo el contenido de la cría en una red de un tamaño de apertura determinado. Este material se vierte luego en una red para acuario estándar en un acuario desnudo. Los mísidos adultos que quedan en la red son devueltos al tanque de cría original, y este proceso es repetido a los pocos días.

 

Larvas de bivalvo

Una razón básica del éxito de la artemia salina y los rotíferos como alimento para las larvas de peces marinos es que es posible para el granjero de peces (o aficionado) producirlos en gran número a relativamente bajo costo y esfuerzo.

Adicionalmente, este alimento puede ser enriquecido, lo qué hace posible ajustar su valor nutricional para las muchas diferentes especies. Los copépodos son una mejor elección por que son la fuente natural de alimento con un perfil nutricional y digestivo característico de la mayoría de los peces marinos.

Los copépodos no son bien aceptados en cultivo por su relativamente largo ciclo de vida,  varias semanas, lo cual dificulta cultivarlos en cantidades requeridas aun en una instalación modesta de cría de peces. Entonces ¿existe otra posibilidad para alimentar organismos en estado larval? ¿Algo que tenga las características esenciales de un perfil nutricional correcto, abundancia en la demanda, aceptación de las larvas de peces marinos? Y si, la hay.

Larva velígera

Uno de los mejores contendientes son las formas larvarias de algunos invertebrados marinos, en particular la trocofora [Fig. 4] y la larva velígera [Fig. 5] de moluscos bivalvos: almejas, ostiones, escalopas, y mejillones: Estos moluscos son producidos comercialmente como organismos alimento acuaculturados y las técnicas de desove y manejo son bien conocidas. De hecho, hay una vasta literatura por todo el mundo de la acuicultura de bivalbos, pero relativamente poco acerca del uso de las formas larvarias como alimento para larvas de peces marinos.

Uno de los factores negativos asociados con el uso de larvas de bivalvos en la acuicultura de peces marinos en una instalación tierra adentro,es que requiere una instalación completa para el cultivo de diferentes macroorganismos, incluyendo algas, solo para la producción de alimento en larvas. El patrón de movimiento el la trocofora es como en los rotíferos y no es como el de los copépodos y no estimula la respuesta de alimentación en algunas larvas de peces.

Fig 4- La larva trocofora. Las características de una larva trocofora aquí se ilustran. La trocofora es el primer estadio larval de quitones, escafópodos, gasterópodos, y bivalvos. La trocofora pasa directamente a un estado juvenil en quitones y escafópodos, pero en gasterópodos y bivalvos para por una larva velígera antes de metamorfosear a un estado juvenil.
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Fig 5 -La larva velígera. El estadio de velígera es diferente en gasterópodos y bivalvos. El desarrollo de la concha vestigial es diferente, ambos tienen un velo, pero la torsión que crea la espiral de la concha de los gasterópododos y el desarrollo de la concha de los ostiones y otros bivalvos cambia la estructura de la larva velígera en estas dos enormes Clases de Moluscos. click para agrandar

Fig 6 - Artemia salina, rotifero y larva velígera de ostión. Numero 1 es el recien eclosionado nauplio de artemia. Numero 2 es un rotifero y número 3 es un grupo de 3 larvas trocoforas de ostión. Estas imágenes fueron tomadas en una misma fotomicrografía de un cultivo mixto de manera que el tamaño de cada organismo esta en proporción con los otros dos
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Sin embargo, hay aspectos sumamente positivos en esta fuente de alimento para los peces en estado larvario. El tamaño de las larvas de varias especies de ostiones, escalopas, almejas, y moluscos tienen tamaños en un intervalo de 30 a 60 mM, un rango que es aceptado como primer alimento por la mayoría de los peces  [Fig 6]. Los ostiones acuaculturados producen una trocofora de 50mM lo que es un cuarto el tamaño de un rotífero y una décima del tamaño de un nauplio de artemia salina. El perfil nutricional de las trocoforas esta influenciado por la alimentación en los adultos como el alga que alimenta las jóvenes trocoforas. Las larvas de ostiones acuaculturados contienen 15% 20:5n3 (EPA) y 15% 22:6n3 (DHA) de ácidos grasos. Esto es mejor que lo provisto por rotíferos o artemias ya que no poseen  ácidos grasos cortos, lo cual no es normalmente encontrado en larvas de peces silvestres. El número de larvas que produce una hembra de bivalvo oscila en los 15 millones, para el ostión americano, a 55m para el ostión del Pacífico, hasta los 77m para la escalopa (Tamura, 1970). Los bivalvos adultos se mantienen fácilmente en sistemas cerrados, son filtradores así que alimentarlos no representará una labor demasiado intensa. La mayoría de las especies acuaculturadas de bivalvos puedes inducirse a desovar según la demanda. La manipulación de la temperatura y a veces un simple shock químico es todo lo que se necesita para iniciar el desove ( yo usé un poco de Vodka una vez para iniciar el desove en un tanque de ostiones)

 

Obteniendo bivalvos

Hay tres maneras de obtener bivalvos para propósitos de desove. Si uno vive cerca del mar, usualmente es posible colectar ostiones y mejillones de la orilla, almejas de los fondos lodosos, y escalopa de los pastizales dependiendo de estacionalidad y latitud,  hacer desovar una especie colectada en su temporada  o  mantener los adultos vivos alimentándolos de almidón de maíz (o alimento de alga) para acondicionarlos a que desoven una semanas después (Utting, 1993).

La última posibilidad es la de obtener embriones criopreservados y estadios larvales primarios de larvas de ostión o almeja, Trochofeed (Cryofeed Ltd, Canada Chao et el 1995). Este método tiene la ventaja de proveer de larvas trocoforas vivas en el estado de desarrollo correcto (De 15 horas de nacidas, ciliadas y de nado libre sin formación de concha) en el momento que se requieran. Para producir un billón de larvas trocoforas se necesitan 240 ostiones debidamente cultivados y desovando. Las larvas se colectan y procesan en nitrógeno líquido a -196°C. Se mantienen selladas en paquetes de polietileno en densidades de 15 -50 millones por paquete y pueden ser sacadas y empacadas en cualquier momento.

En pocos días la larva trocofora se convierte en una velígera con un velum y una concha vestigial. Se adhieren al sustrato en un tiempo de 10 a 15 días. El estado velígera no es tan bueno como el de trocofora para alimentar los peces por el desarrollo de la concha, pero larvas más grandes se pueden alimentar con ellas. Bajo ciertas situaciones, para ciertas especies valiosas, por ejemplo, el uso de trocoforas en el cultivo de peces marinos puede ser realmente útil.

 

Referencias


Bowman, T. 1964 Mysidopsis almyra, a new estuarine mysid crustacean from Louisiana and Florida. Tulane Studies in Zoology, 12, 15 18.

Chao, N. H., Lin, T. T., Chen, Y. J. and Hsu, H. W. 1995 Cryopreservation of late embryos and early larvae of oyster and hard clam. In: Larvi’ 95 – Fish and Shellfish Larviculture Symposium. Lavens, P., E. Jaspers, and I. Roelandts (Eds.). European Aquaculture Society, Special Publication NO. 24, Gent, Belgium, p 46.

Domingues, P., Turk, P.E., Andrade, J.P., Lee, P.G. 1998 Pilot-scale production of mysid shrimp in a static water system. Aquaculture International, 6, 387 402.

Hanlon, R.T., Turk, P.E., Lee, P.G. 1991 Squid and cuttlefish mariculture: an updated perspective. Journal of Cephalopod Biology, 2, 31 40.

Hemdal, Jay. Raising Mysid Shrimp as a Home Aquarium Food. Seascope 2000.

Kuhn, A.H., Bengtson, D.A., Simpson, K.L. 1991 Increased reproduction by mysids (Mysidopsis bahia) fed with enriched Artemia spp. nauplii. American Fisheries Society Symposium, 9, 192 199.

Lussier, S.M., Kuhn, A., Chammas, M.J., Sewall, J. 1988 Techniques for the laboratory culture of Mysidopsis species (Crustacea: Mysidacea). Environmental Toxicology and Chemistry, 7, 969 977.

Miller, D.C., Poucher, S., Cardin, J.A., Hansen, D. 1990 The acute and chronic toxicity of ammonia to marine fish and a mysid. Archives of Environmental Contamination and Toxicology, 19, 40 48.

McKenney, C.L. 1996 The combined effects of salinity and temperature on various aspects of the reproductive biology of the estuarine mysid, Mysidopsis bahia. Invertebrate Reproduction and Development, 29, 9 18.

Mauchline, J. 1980 The biology of mysids and euphausids. In: Advances in Marine Biology. Part 1. The Biology of Mysids, Vol. 18 (eds J.H.S. Blaxter, F.S. Russel & C.M. Yonge), 1 369. Academic Press, London.

Price, W.W. 1976 The Abundance and Distribution of Mysidacea in the Shallow Waters of Galveston Island, Texas. PhD Thesis, Texas A & M University, College Station, TX.

Reitsema, L. & Neff, J.M. 1980 A recirculating artificial seawater system for the laboratory culture of Mysidopsis almyra (Crustacea; Pericaridea). Estuaries, 3, 321 323.

Tamura, T. 1970. Marine Aquaculture. National Science Foundation. Translation from the Japanese of the revised and enlarged second edition. 1966.

Utting, S. D. 1993. Procedures for the maintenance and hatchery-conditioning of broodstocks. World Aquaculture, 24(3): 78-82.

 

Proveedores de cultivo de mísidos:

Aquatic Research Organisms
Mark Rosenqvist
1-800-927-1650

Chesapeake Cultures
Elizabeth Wilkens
1-804-693-4046

C-K Aquaculture
1-318-797-8636

Aquatic Indicators
Ray Less
1-904-829-2780
(Commercial accounts only)

http://www.zooplankton.com/mysid/mysid.htm


 

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